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酶联免疫吸附测定(ELISA)

问题类型

现象描述

核心原因

解决方案

标准曲线无梯度 / 线性差

标准品检测值无明显浓度依赖,R²<0.98

1. 标准品降解或稀释错误;

 

2. 包被液 pH 不适(偏离抗原等电点);

 

3. 孵育温度 / 时间失控;

 

4. 底物反应不充分

1. 标准品分装冻存,避免反复冻融,严格按倍比稀释;

 

2. 调整包被液 pH(常用 0.05M 碳酸盐缓冲液,pH9.6);

 

3. 4℃包被过夜,37℃孵育标准品 1~2h;

 

4. 底物室温避光反应 15~30min,及时终止

空白孔 OD 值过高

空白孔(无抗原 / 抗体)OD 值显著高于正常阈值

1. 酶标二抗浓度过高或非特异性结合;

 

2. 封闭不充分(封闭液选择不当 / 时间短);

 

3. 洗涤不彻底,残留酶标试剂;

 

4. 底物自身显色或污染

1. 降低二抗浓度,选用交叉吸附二抗;

 

2. 用 5% 脱脂奶粉或 BSA 封闭 1~2h(室温);

 

3. 洗涤液含 0.05% Tween-20,洗板 5~6 次,每次 30s;

 

4. 选用新鲜底物,避免试剂污染

样品 OD 值偏低 / 无信号

样品检测值接近空白,低于检出限

1. 抗原 / 抗体浓度过低或失效;

 

2. 包被效率低(抗原未吸附到板上);

 

3. 孵育时间不足或温度过低;

 

4. 底物失效或终止过早

1. 优化抗原 / 抗体浓度,验证试剂有效期;

 

2. 增加包被抗原用量,4℃包被过夜;

 

3. 37℃孵育样本 2h 或 4℃过夜;

 

4. 使用有效期内底物,严格控制反应时间

重复性差(孔间 / 板间差异大)

同浓度样本孔间 OD 值变异系数(CV)>10%

1. 加样体积不均一;

 

2. 洗板时孔间液体残留差异;

 

3. 孵育时酶标板受热不均;

 

4. 底物加样顺序混乱

1. 使用多道移液器,加样后轻拍混匀;

 

2. 洗板后倒扣拍干,避免孔底残留液体;

 

3. 孵育时密封酶标板,置于恒温孵箱;

 

4. 底物按同一顺序快速加样

钩状效应(高浓度样本 OD 值低)

高浓度抗原样本 OD 值低于中浓度样本

抗原浓度过高,导致抗原与固相抗体、酶标抗体分别结合,无法形成夹心复合物

1. 对高浓度样本进行梯度稀释后再检测;

 

2. 降低包被抗体浓度,优化反应体系比例;

 

3. 缩短抗原与抗体的孵育时间

非特异性显色(背景高)

整板显色均匀,样本孔与空白孔差异小

1. 抗体可能非特异性结合;

 

2. 封闭液与抗原存在交叉反应;

 

3. 洗涤液浓度过低;

 

4. 温育时湿度不足,板孔边缘干燥

1. 优化抗体;

 

2.更换封闭液(如 BSA 替代脱脂奶粉);

 

3.提高洗涤液中 Tween-20 浓度至 0.1%;

 

4. 孵育时板内加湿纱布,防止边缘效应


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