问题类型 | 核心原因 | 解决方案 |
无目的蛋白沉淀 / 信号弱 | 1. 蛋白相互作用弱 / 短暂(未及时固定);
2. 裂解液成分不当(去垢剂浓度过高 / 过低);
3. 洗涤过度导致复合物解离;
4. 蛋白表达量极低
5. 抗体浓度过低;
| 1. 加入交联剂(如 DSP)固定相互作用,全程冰上操作;
2. 调整裂解液去垢剂浓度(0.1%~1% Triton X-100),加入蛋白酶 / 磷酸酶抑制剂;
3. 减少洗涤次数(3~4 次),降低洗涤缓冲液盐浓度;
4. 富集样本或使用高灵敏度检测方法
5. 优化抗体稀释比例(1:50~1:200);
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非特异性背景高(杂带多) |
1. 封闭不充分;
2. 洗涤不彻底;
3. 蛋白样品降解;
4. beads 非特异性吸附
5. 抗体可能非特异性结合;
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1. 用 5% BSA 或脱脂奶粉封闭 beads 1~2h;
2. 增加洗涤次数(4~5 次),使用含 0.1% Tween-20 的洗涤缓冲液;
3. 全程冰上操作,添加新鲜抑制剂;
4. 预孵育 beads 与无关蛋白(如 BSA),减少非特异性吸附
5. 设置 IgG 同型对照;
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共沉淀蛋白未检测到 | 1. 蛋白相互作用条件未满足(如需要辅因子);
2. 裂解液破坏蛋白复合物;
3. 检测抗体灵敏度不足;
4. 孵育时间 / 温度不当 | 1. 模拟生理条件(添加必要辅因子、调整 pH 值);
2. 降低裂解液去垢剂强度,使用温和裂解液(如 NP-40 裂解液);
3. 放大检测信号;
4. 4℃孵育过夜,确保相互作用充分发生 |
beads 聚集 / 沉淀不完全 | 1. beads 浓度过高;
2. 抗体与 beads 结合不充分;
3. 孵育时未充分摇匀;
4. 离心速度 / 时间不足 | 1. 调整 beads 用量(每样品 20~50μL);
2. 抗体与 beads 先室温孵育 1~2h,再加入样品;
3. 孵育时置于摇床上缓慢摇匀(50~100rpm);
4. 增加离心速度(10000~12000rpm)或延长离心时间(5~10min) |
蛋白降解 | 1. 裂解液中未加 / 加了失效的抑制剂;
2. 样本处理时间过长;
3. 操作温度过高;
4. 反复冻融样品 | 1. 新鲜添加蛋白酶 / 磷酸酶抑制剂鸡尾酒;
2. 缩短样本处理时间(<2h);
3. 全程冰上或 4℃操作;
4. 样品分装冻存,避免反复冻融 |
假阳性结果(错误共沉淀) | 1. 抗体交叉反应;
2. beads 非特异性吸附强;
3. 样品中存在蛋白聚合体;
4. 洗涤缓冲液盐浓度过低 | 1. 验证抗体特异性,使用交叉吸附抗体;
2. 优化封闭和预孵育步骤;
3. 裂解液中加入还原剂(如 DTT),避免蛋白聚合;
4. 适当提高洗涤缓冲液盐浓度(150~300mM NaCl) |