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免疫共沉淀(Co-IP)

问题类型

核心原因

解决方案

无目的蛋白沉淀 / 信号弱

1. 蛋白相互作用弱 / 短暂(未及时固定);

 

2. 裂解液成分不当(去垢剂浓度过高 / 过低);

 

3. 洗涤过度导致复合物解离;

 

4. 蛋白表达量极低

 

5. 抗体浓度过低;

 

1. 加入交联剂(如 DSP)固定相互作用,全程冰上操作;

 

2. 调整裂解液去垢剂浓度(0.1%~1% Triton X-100),加入蛋白酶 / 磷酸酶抑制剂;

 

3. 减少洗涤次数(3~4 次),降低洗涤缓冲液盐浓度;

 

4. 富集样本或使用高灵敏度检测方法

 

5. 优化抗体稀释比例(1:50~1:200);

 

非特异性背景高(杂带多)

 

1. 封闭不充分;

 

2. 洗涤不彻底;

 

3. 蛋白样品降解;

 

4. beads 非特异性吸附

 

5. 抗体可能非特异性结合;

 

 

1. 用 5% BSA 或脱脂奶粉封闭 beads 1~2h;

 

2. 增加洗涤次数(4~5 次),使用含 0.1% Tween-20 的洗涤缓冲液;

 

3. 全程冰上操作,添加新鲜抑制剂;

 

4. 预孵育 beads 与无关蛋白(如 BSA),减少非特异性吸附

 

5. 设置 IgG 同型对照;

 

共沉淀蛋白未检测到

1. 蛋白相互作用条件未满足(如需要辅因子);

 

2. 裂解液破坏蛋白复合物;

 

3. 检测抗体灵敏度不足;

 

4. 孵育时间 / 温度不当

1. 模拟生理条件(添加必要辅因子、调整 pH 值);

 

2. 降低裂解液去垢剂强度,使用温和裂解液(如 NP-40 裂解液);

 

3. 放大检测信号;

 

4. 4℃孵育过夜,确保相互作用充分发生

beads 聚集 / 沉淀不完全

1. beads 浓度过高;

 

2. 抗体与 beads 结合不充分;

 

3. 孵育时未充分摇匀;

 

4. 离心速度 / 时间不足

1. 调整 beads 用量(每样品 20~50μL);

 

2. 抗体与 beads 先室温孵育 1~2h,再加入样品;

 

3. 孵育时置于摇床上缓慢摇匀(50~100rpm);

 

4. 增加离心速度(10000~12000rpm)或延长离心时间(5~10min)

蛋白降解

1. 裂解液中未加 / 加了失效的抑制剂;

 

2. 样本处理时间过长;

 

3. 操作温度过高;

 

4. 反复冻融样品

1. 新鲜添加蛋白酶 / 磷酸酶抑制剂鸡尾酒;

 

2. 缩短样本处理时间(<2h);

 

3. 全程冰上或 4℃操作;

 

4. 样品分装冻存,避免反复冻融

假阳性结果(错误共沉淀)

1. 抗体交叉反应;

 

2. beads 非特异性吸附强;

 

3. 样品中存在蛋白聚合体;

 

4. 洗涤缓冲液盐浓度过低

1. 验证抗体特异性,使用交叉吸附抗体;

 

2. 优化封闭和预孵育步骤;

 

3. 裂解液中加入还原剂(如 DTT),避免蛋白聚合;

 

4. 适当提高洗涤缓冲液盐浓度(150~300mM NaCl)


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